دوره 9، شماره 3 - ( 1403 )
دوره 9 شماره 3 صفحات 195-189 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Talebian N. The Effect of Freezing and Thawing on the Viability and Motility of Human Sperm: A Review Study. SJMR 2024; 9 (3) : 8
URL: http://saremjrm.com/article-1-342-fa.html
URL: http://saremjrm.com/article-1-342-fa.html
طالبیان نرگس. تاثیر فریز و ذوب بر روی بقا و میزان تحرک در اسپرم انسان: یک مطالعه مروری. مجله تحقيقات پزشكي صارم. 1403; 9 (3) :189-195
مرکز تحقیقات زنان زایمان و ناباروری صارم، بیمارستان فوق تخصصی صارم، دانشگاه علوم پزشکی ایران، تهران، ایران & مرکز تحقیقات سلولی-مولکولی و سلول‌های بنیادی صارم، بیمارستان فوق تخصصی صارم تهران، ایران
چکیده: (3936 مشاهده)
انجماد اسپرم انسان از اواخر دهه 1950 برای بیمارانی که تحت شیمی درمانی یا رادیوتراپی قرار می‌گیرند، مورد استفاده بوده است. انجماد اسپرم یک روش پرکاربرد برای حفظ اسپرم است، انجماد اسپرم به طور فزاینده‌ای حتی در موارد اختلالات دیگر، مانند بیماری‌های خودایمنی که بر عملکرد تولید مثل تأثیر می‌گذارد موثر است. علاوه بر این، انجماد اسپرم به بیماران مبتلا به اولیگواسپرمی شدید یا اختلال انزال برای تزریق داخل سیتوپلاسمی اسپرم (ICSI) ارایه می‌شود. همچنین برخی بیماری‌های غیر بدخیم مانند دیابت و اختلالات خود ایمنی ممکن است منجر به آسیب بیضه شود و انجماد در این شرایط نیز توصیه می‌شود. در حال حاضر تکنیک‌های مختلفی برای انجماد اسپرم وجود دارد تکنیک ایده‌آل برای دستیابی به کیفیت بهتر اسپرم پس از ذوب همچنان یک راز باقی مانده است. یک مانع اصلی در حین انجماد، تشکیل کریستال‌های یخ درون سلولی است. Cryodamage ایجاد شده توسط انجماد باعث تغییرات ساختاری و مولکولی در اسپرم می‌شود. صدمات ممکن است به دلیل استرس اکسیداتیو، استرس دمایی و استرس اسمزی اتفاق بیفتد، که سپس منجر به تغییر در سیالیت غشای پلاسمایی، تحرک، زنده بودن و یکپارچگی DNA اسپرم می‌شود. روش‌های متعددی برای فریز-ذوب مایع منی وجود دارد که ممکن است آسیب‌هایی بر عملکرد اسپرم ، حیات اسپرم و در نهایت درصد کیفیت و باروری وارد کند. انجماد اسپرم انسان در حال حاضر بیش از 80 سال است که وجود دارد و روش‌های تجربی هنوز هم امروزه استفاده می‌شود. هدف مشترک همه تکنیک‌های مورد استفاده دستیابی به بالاترین بقای سلولی پس از ذوب است، زیرا درصد حیات و تحرک اسپرم پس از فریز-ذوب کاهش می‌یابد. سلول‌ها در طول انجماد با موانع زیادی روبرو هستند و آسیب‌های سرمایی ممکن است رخ دهد. یک مانع بزرگ، تشکیل کریستال‌های یخ درون سلولی است. می‌دانیم که آب مایع برای عملکرد سلول‌های زنده ضروری است، اما انجماد آن می‌تواند کشنده باشد. آسیب سرمایی شناخته شده، که می‌تواند هنگام انجماد اسپرم اتفاق بیفتد. به طور خلاصه، انجماد اسپرم یک تکنیک ضروری است، می‌تواند در عملکرد ها و سطوح مختلف سلولی مشاهده شود، اما اثرات منفی زیادی بر پارامترهای اسپرم دارد، مانند: کاهش تحرک و زنده ماندن اسپرم، کاهش نرخ فعالیت میتوکندری، کاهش در یکپارچگی DNA، و افزایش در تولید گونه‌های اکسیژن فعال (ROS). با بررسی مقالات، هیچ نتیجه قطعی در رابطه با اولویت بندی یک روش خاص وجود ندارد، اما می‌توان فرض کرد که آینده روشنی برای بهینه سازی روش‌های انجماد وجود دارد که بتوانیم به نتایج باروری بهتر و نرخ بارداری بالاتر دست یابیم. محققان در حال کشف روش‌های جدیدی برای بهبود پارامترهای اسپرم پس از ذوب هستند.
شماره‌ی مقاله: 8
نوع مقاله: مروری سیستماتيک |
موضوع مقاله:
ناباروری
دریافت: 1403/8/12 | پذیرش: 1403/9/20 | انتشار: 1403/11/15
دریافت: 1403/8/12 | پذیرش: 1403/9/20 | انتشار: 1403/11/15
فهرست منابع
1. Hezavehei, et.al. Sperm servation: A review on current molecular cryobiology and advanced approaches. Reprod. Biomed. Online, 2018:37(3); 327-39 [DOI:10.1016/j.rbmo.2018.05.012] [PMID]
2. Ram Dayal, et al. Effect of Semen Freezing and Thawing on Sperm Survival and Motility Rate: A Comparative Analysis 2021:511-517 [DOI:10.32628/IJSRST218483]
3. Surg Lt, et al. Study of human sperm motility post cryopreservation. Medical Services, Armed Forces.2014:349-353 [DOI:10.1016/j.mjafi.2014.09.006] [PMID] []
4. Majzoub A, Agarwal A. Antioxidants in sperm cryopreservation. Male Infertility. 2020:671-8 [DOI:10.1007/978-3-030-32300-4_54]
5. Albrizio M, et al. Localization and functional modification of L-type voltage-gated calcium channels in equine spermatozoa from fresh and frozen semen. Theriogenology. 2015: 83(3): 421-9 [DOI:10.1016/j.theriogenology.2014.10.005] [PMID]
6. Benson, J, et al. The cryobiology of spermatozoa. Theriogenology 2012: 78, 1682-1699. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2012.06.007] [PMID]
7. Amidi F, Pazhohan A, et al. The role of antioxidants in sperm freezing: a review. Cell Tissue Bank. 2016: 17(4): 745-756. [DOI:10.1007/s10561-016-9566-5] [PMID]
8. Bateni Z, Azadi L, et al. Addition of Tempol in semen cryopreservation medium improves the post-thaw sperm function. Syst Biol Reprod Med. 2014: 60 (4): 245-50. [DOI:10.3109/19396368.2014.897773] [PMID]
9. Azadi L, Tavalaee M, et al. Effects of Tempol and Quercetin on Human Sperm Function after Cryopreservation. Cryo Letters. 2017: 38(1):
10. Sanja Ozimic, et al. Sperm Cryopreservation Today: Approaches, Efficiency, and Pitfalls Mol. Biol. 2023:45, 4716-4734 [DOI:10.3390/cimb45060300] [PMID] []
11. Di Santo, et al. Human sperm cryopreservation: update on techniques, effect on DNA integrity, and implications for ART. Adv Urol, 2012: 854837. [DOI:10.1155/2012/854837] [PMID] []
12. Anger JT, et al. Cryopreservation of sperm: indications, methods and results. J. urol. 2003:.170(4); 1079-84 [DOI:10.1097/01.ju.0000084820.98430.b8] [PMID]
13. Justice T, Christensen G. Sperm cryopreservation methods. Spermatogenesis. 2013: 209-15. [DOI:10.1007/978-1-62703-038-0_18] [PMID]
14. Martins, et al. Sperm cryopreservation. In vitro fertilization: 2019: 625-42 [DOI:10.1007/978-3-319-43011-9_51]
15. Said TM, et al. Implication of apoptosis in sperm cryoinjury. Reprod Biomed Online. 2010: 21(4): 456-62 [DOI:10.1016/j.rbmo.2010.05.011] [PMID]
16. Ibrar Muhammad Khan, et al. Impact of Cryopreservation on Spermatozoa Freeze-Thawed Traits and Relevance OMICS to Assess Sperm Cryo-Tolerance in Farm Animals.2021:volum8 [DOI:10.3389/fvets.2021.609180] [PMID] []
17. Li,Y-x, et al. Vitrification and conventional freezing methods in sperm cryopreservation: A systematic review and metaanalysis. Eur.J.Obstet.Gynecol, 2019: 233;84-92 [DOI:10.1016/j.ejogrb.2018.11.028] [PMID]
18. Li, Z, et al. Update on techniques for cryopreservation of human spermatozoa. Asian J. Androl. 2022: 24, 563 [DOI:10.4103/aja20229] [PMID] []
19. Sharma R, et al. Effect of sperm storage and selection techniques on sperm parameters. Syst Biol Reprod Med. 2015: 61(1):1-1 [DOI:10.3109/19396368.2014.976720] [PMID]
20. Desrosiers P, et al. Membranous and structural damage that occur during cryopreservation of human sperm may be time-related events. Fertil. Steril. 2006:85, 1744-1752 [DOI:10.1016/j.fertnstert.2005.11.046] [PMID]
21. Sanja Ozimic, et al. Sperm Cryopreservation Today: Approaches, Efficiency, and Pitfalls. Issues Mol. Biol. 2023: 45, 4716-4734ه [DOI:10.3390/cimb45060300] [PMID] []
22. Li, Z, et al. Update on techniques for cryopreservation of human spermatozoa. Asian J. Androl. 2022: 24, 563 [DOI:10.4103/aja20229] [PMID] []
23. Paoli, D, et al. Sperm Cryopreservation: Effects on Chromatin Structure. Genet. Damage Hum. Spermatozoa 2014: 791, 137-150. [DOI:10.1007/978-1-4614-7783-9_9] [PMID]
24. Yeste M. Sperm cryopreservation update: Cryodamage, markers, and factors affecting the sperm freezability in pigs. Theriogenology. 2016; 85(1): 47-64 [DOI:10.1016/j.theriogenology.2015.09.047] [PMID]
25. Pegg DE. Principles of Cryopreservation. Cryopreserv. Free. Dry. Protoc. 2015, 1257, 3-19 [DOI:10.1007/978-1-4939-2193-5_1] [PMID]
26. Isachenko V, et al. Vitrification of Human ICSI/IVF Spermatozoa without Cryoprotectants: New Capillary Technology. J. Androl. 2012:33, 462-468, [DOI:10.2164/jandrol.111.013789] [PMID]
27. Anger JT, Gilbert BR, Goldstein M. Cryopreservation of Sperm: Indications, Methods and Results. J. Urol. 2003, 170, 1079-1084. [DOI:10.1097/01.ju.0000084820.98430.b8] [PMID]
28. Kidd SA, et al. Effects of male age on semen quality and fertility: a review of the literature. Fertility and Sterility2001; 75(2):237-48 [DOI:10.1016/S0015-0282(00)01679-4] [PMID]
29. Ozkavukcu S, et al. Effects of cryopreservation on sperm parameters and ultrastructural morphology of human spermatozoa. Journal of assisted reproduction and genetics. 2008; 25:403-11 [DOI:10.1007/s10815-008-9232-3] [PMID] []
30. Barratt CLR, et al. special interest group for andrology basic semen analysis course: A continued focus on accuracy, quality, efficiency and clinical relevance. Hum. Reprod. 2011, 26, 3207-3212. [DOI:10.1093/humrep/der312] [PMID]
31. Björndahl, L. The usefulness and significance of assessing rapidly progressive spermatozoa. Asian J. Androl. 2010, 12, 33-35. [DOI:10.1038/aja.2008.50] [PMID] []
32. O'Connell M, et al. The effects of cryopreservation on sperm morphology, motility and mitochondrial function. Hum. Reprod. 2002, 17, 704-709. [DOI:10.1093/humrep/17.3.704] [PMID]
33. Flores E, et al. Cryopreservation-induced alterations in boar spermatozoa mitochondrial function are related to changes in the expression and location of midpiece mitofusin-2 and actin network.theriogenology.2010.:74(3):354-63 [DOI:10.1016/j.theriogenology.2010.02.018] [PMID]
34. Agha-Rahimi A, et al. Cryoprotectant-free, vitrification of human spermatozoa in new artificial seminal fluid. Andrology. 2016; 4(6): 1037-1044 [DOI:10.1111/andr.12212] [PMID]
35. Tavalaee M, et al. Effect of varicocelectomy on sperm functional characteristics and DNA methylation. Andrologia. 2015; 47(8): 904-9 [DOI:10.1111/and.12345] [PMID]
36. Karakus, FN, et al. Effect of curcumin on sperm parameters after the cryopreservation. Eur. J. Obstet. Gynecol Reprod. Biol. 2021, 267, 161-166. [DOI:10.1016/j.ejogrb.2021.10.027] [PMID]
37. Naeini ZK, et al. Evaluation of ebselen supplementation on cryopreservation medium in human semen. Iran J Reprod Med 2014; 12:249-56
38. Rarani FZ, et al. Correlation between sperm motility and sperm chromatin/DNA damage before and after cryopreservation and the effect of folic acid and nicotinic acid on post-thaw sperm quality in normozoospermic men. Cell Tissue Bank 2019 [DOI:10.1007/s10561-019-09775-6] [PMID]
39. 28:1-12an abscess. Arch Gynecol Obstet. 1997;261(1):55-8
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
